细胞培养起来感觉会很简单，但是有时候也会出现各种不顺的问题 ，例如：污染，生长缓慢，变形，死亡率过高…..，毕竟细胞是体外培养的，在培养的时候会受到各种外界因素的影响，培养基、血清、孵育温度、C02浓度等，除此之外还有抗生素……
一般来说细胞培养是不需要加抗生素，因为细胞培养必须要无菌操作。如果实验室污染严重，建议*打扫一下，擦拭消毒、熏蒸或者紫外照射杀菌。然后把细胞实验涉及到的试剂都做下空培，包括使用的胰酶，胎牛血清等。如果实验室无菌条件优异，细胞培养可以不加抗生素，因为抗生素的药效水平和毒性水平非常接近。特别是用于细胞治疗的培养。
若当心细胞感染，可以适当添加一些抗生素预防，如果已经有污染，建议按照以下方案添加：
１、常用的是青霉素、链霉素联合抑制细菌，即所谓的“双抗”，主要针对革兰氏阳性菌、阴性菌；对于细菌的感染也可用庆大或卡那霉素；
２、如果真菌污染严重，可用两性霉素／制霉菌素控制；
３、若为支原体污染， 可以用sciencell的支原体抑制剂。在培养基中加入新鲜的支原体抑制剂溶液，每3-4天更换一次。一两周内的足以消除污染。可以有效的可以查杀各种原因感染的支原体。
抗生素多加对细胞无益。加抗生素的主要问题是操作不慎造成的污染未必能及时发现，造成后期较大的损失。
青链霉素是广谱抑菌剂，对革兰氏阴性和阳性细菌有抗菌性，青霉素影响细菌细胞壁合成的终末步骤，在转肽反应步骤一直多肽链的延伸；链霉素与核糖体的30S亚基单位结合，阻断细菌蛋白质的组成。比较常用 。一般用于哺乳动物细胞培养。
一旦细胞污染，处理办法扔掉，查找原因，全面预防。如果细胞是经过大量工作或高价才得到的，扔掉实在可惜，可以针对污染源加抗生素。也可以不加抗生素进行单克隆有限稀释至96孔板，再克隆化。
但是污染带来的实验影响和损失不可估量，主要的是平常都要做好细胞房的管理和消毒工作。防止污染的发生。
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